Обеспечение воспроизводимости экспериментов и стандартизации культивирования сфероидов гепатоцитов путем выбора микропланшетов на основе научных данных

Основанный на доказательствах выбор поверхности для культивирования обеспечивает воспроизводимость экспериментов и стандартизацию методов

Установление подходящих условий культивирования для каждого типа клеток имеет решающее значение для обеспечения воспроизводимости экспериментов в различных лабораториях по всему миру. Помимо контроля ключевых факторов, таких как обеспечение питательными веществами и факторами роста, а также температуры и атмосферных условий, выбор сосудов для культивирования, в частности поверхности, имеет критически важное значение для успешного роста клеток.

В двухмерной клеточной культуре адгезия клеток к поверхности может быть усилена или обеспечена за счёт введения гидрофильных групп в поверхность пластика (узнайте больше о наших вариантах двухмерного культивирования клеток на сайте cellculture.sarstedt.com). В качестве альтернативы поверхность культивирования дополнительно может быть покрыта белками внеклеточного матрикса.

В свою очередь, чтобы предотвратить адгезию клеток к поверхности культивирования и тем самым способствовать образованию трехмерных многоклеточных структур, например сфероидов, предварительно обработанные коммерческие сосуды для культивирования в настоящее время представляют собой вариант, который обеспечивает наиболее стабильные и воспроизводимые экспериментальные результаты.

Разрабатывая информативные in vitro-модели для раннего прогнозирования гепатотоксичности и фармакокинетических свойств при разработке лекарственных средств с использованием первичных гепатоцитов человека или собаки, рабочая группа проф. д-ра Лаушке стремится внести вклад в стандартизацию методологии в этой области, чтобы одновременно снизить необходимость в экспериментах на животных. [1]

Было показано, что при длительном культивировании печеночные сфероиды сохраняют физиологически значимые фенотипы и функции, что делает их пригодными как для фармакологических и токсикологических высокопроизводительных приложений, так и для экспериментальногомоделирования хронических заболеваний, требующих повторного воздействия лекарственных средств. [2-9]

Имеющиеся в продаже предварительно покрытые/обработанные 3D- планшеты для культивирования клеток представляют собой быстрый и простой метод генерации сфероидов. Доступные планшеты различаются как по геометрии, так и по покрытию. Эти факторы влияют на жизнеспособность клеток, молекулярный фенотип, а также на доступность активных веществ. Последнее может быть снижено из-за высокой связывающей способности покрытий. [10,11]

В недавно опубликованном исследовании планшеты для культивирования клеток BIOFLOAT™ продемонстрировали превосходные результаты по ключевому показателю качества — образованию отдельных сфероидов в каждой лунке с первичными гепатоцитами человека (PHH) в ≥ 95 % лунок. Сфероиды PHH, культивированные на BIOFLOAT™, демонстрировали жизнеспособность клеток ≥ 90 %, при этом сохранялась экспрессия ключевых генов печени, связанных с метаболизмом лекарственных средств, расщеплением этанола, синтезом желчных кислот и дифференцировкой.

При обработке сфероидов PHH прототипными гепатотоксическими веществами сфероиды PHH с BIOFLOAT™ реагировали даже на самые низкие концентрации вещества, что свидетельствует о том, что доступность вещества не снижалась из-за покрытия планшета.

Чтобы снизить потребность в экспериментах на животных при доклинических испытаниях лекарственных средств, первичные гепатоциты собак (PCH) можно использовать в виде сфероидов для уже устоявшихся анализов. Для получения физиологически значимых и функциональных сфероидов из гепатоцитов собак для тестов на острую и хроническую токсичность решающее значение имеет выбор поверхности культивирования. BIOFLOAT™ позволяет успешно культивировать сфероиды первичных гепатоцитов собак и, таким образом, потенциально расширяет арсенал доклинических методов.

В целом эти результаты подчеркивают пригодность BIOFLOAT™ для культивирования гепатоцитов в доклинических фармакологических и токсикологических исследованиях активных веществ по сравнению с различными коммерчески доступными вариантами.

USE - LS - BIOFLOAT - Landingpage - Subpage Studie

Требуется согласие на маркетинг

ссылки

[1] Xing C, Kemas A, Mickols E, Klein K, Artursson P, Lauschke VM. Le choix de plaques de fixation ultra-faible affecte la formation primaire des sphéroïdes hépatiques humains et canins primaires, les phénotypes et la fonction. Biotechnol J. 2024 Feb;19(2):e2300587. doi : 10.1002/biot.202300587. PMID : 38403411.

[2] Bell CC, Lauschke VM, Vorrink SU, Palmgren H, Duffin R, Andersson TB, Ingelman-Sundberg M. Transcriptional, Functional, and Mechanistic Comparisons of Stem Cell-Derived Hepatocytes, HepaRG Cells, and Three-Dimensional Human Hepatocyte Spheroids as Predictive In Vitro Systems for Drug-Induced Liver Injury. Drug Metab Dispos. 2017 Apr;45(4):419-429. doi : 10.1124/dmd.116.074369. Epub 2017 Jan 30. PMID : 28137721 ; PMCID : PMC5363699.

[3] Vorrink SU, Ullah S, Schmidt S, Nandania J, Velagapudi V, Beck O, Ingelman-Sundberg M, Lauschke VM. Stabilité métabolique endogène et xénobiotique des hépatocytes humains primaires dans des cultures sphéroïdales 3D à long terme révélée par une combinaison de métabolomique ciblée et non ciblée. FASEB J. 2017 Jun;31(6):2696-2708. doi : 10.1096/fj.201601375R. Epub 2017 Mar 6. PMID : 28264975 ; PMCID : PMC5434660.

[4] Messner S, Fredriksson L, Lauschke VM, Roessger K, Escher C, Bober M, Kelm JM, Ingelman-Sundberg M, Moritz W. Transcriptomic, Proteomic, and Functional Long-Term Characterization of Multicellular Three-Dimensional Human Liver Microtissues. Appl In Vitro Toxicol. 2018 Mar 1;4(1):1-12. doi : 10.1089/aivt.2017.0022. PMID : 32953943 ; PMCID : PMC7500040.

[5] Vorrink SU, Zhou Y, Ingelman-Sundberg M, Lauschke VM. Prediction of Drug-Induced Hepatotoxicity Using Long-Term Stable Primary Hepatic 3D Spheroid Cultures in Chemically Defined Conditions. Toxicol Sci. 2018 Jun 1;163(2):655-665. doi : 10.1093/toxsci/kfy058. PMID : 29590495 ; PMCID : PMC5974779.

[6] Proctor WR, Foster AJ, Vogt J, Summers C, Middleton B, Pilling MA, Shienson D, Kijanska M, Ströbel S, Kelm JM, Morgan P, Messner S, Williams D. Utility of spherical human liver microtissues for prediction of clinical drug-induced liver injury. Arch Toxicol. 2017 Aug;91(8):2849-2863. doi : 10.1007/s00204-017-2002-1. Epub 2017 Jun 13. PMID : 28612260 ; PMCID : PMC5515971.

[7] Riede J, Wollmann BM, Molden E, Ingelman-Sundberg M. Primary human hepatocyte spheroids as an in vitro tool for investigating drug compounds with low clearance. Drug Metab Dispos. 2021 Jun 1:DMD-AR-2020-000340. doi : 10.1124/dmd.120.000340. Epub ahead of print. PMID : 34074732.

[8] Kanebratt KP, Janefeldt A, Vilén L, Vildhede A, Samuelsson K, Milton L, Björkbom A, Persson M, Leandersson C, Andersson TB, Hilgendorf C. Primary Human Hepatocyte Spheroid Model as a 3D In Vitro Platform for Metabolism Studies. J Pharm Sci. 2021 Jan;110(1):422-431. doi : 10.1016/j.xphs.2020.10.043. Epub 2020 Oct 26. PMID : 33122050.

[9] Preiss LC, Lauschke VM, Georgi K, Petersson C. Multi-Well Array Culture of Primary Human Hepatocyte Spheroids for Clearance Extrapolation of Slowly Metabolized Compounds. AAPS J. 2022 Mar 11;24(2):41. doi : 10.1208/s12248-022-00689-y. PMID : 35277751.

[10] Costa EC, de Melo-Diogo D, Moreira AF, Carvalho MP, Correia IJ. Formation de sphéroïdes sur des surfaces non adhésives par la technique de superposition liquide : Considérations et approches pratiques. Biotechnol J. 2018 Jan;13(1). doi : 10.1002/biot.201700417. Epub 2017 Nov 15. PMID : 29058365.

[11] Palmgrén JJ, Mönkkönen J, Korjamo T, Hassinen A, Auriola S. Drug adsorption to plastic containers and retention of drugs in cultured cells under in vitro conditions. Eur J Pharm Biopharm. 2006 Nov;64(3):369-78. doi : 10.1016/j.ejpb.2006.06.005. Epub 2006 Jun 29. PMID : 16905298.