Zapewnienie powtarzalności eksperymentów i standaryzacji hodowli sferoidów hepatocytów poprzez wybór płytek mikrotitracyjnych oparty na dowodach naukowych

Wybór powierzchni hodowlanej oparty na dowodach naukowych zapewnia powtarzalność eksperymentów i standaryzację metodologiczną

Ustalenie odpowiednich warunków hodowli dla każdego typu komórek ma kluczowe znaczenie dla zapewnienia powtarzalności eksperymentów w różnych laboratoriach na całym świecie. Oprócz kontroli kluczowych czynników, takich jak dostarczanie składników odżywczych i czynników wzrostu, a także temperatury i warunków atmosferycznych, decydujące znaczenie dla pomyślnego wzrostu komórek ma wybór naczyń hodowlanych, a dokładniej – powierzchni hodowlanej.

W hodowli komórkowej 2D przyleganie komórek do powierzchni hodowli można ułatwić lub w ogóle umożliwić poprzez wprowadzenie grup hydrofilowych do powierzchni tworzywa sztucznego (więcej informacji na temat naszych opcji hodowli komórkowej 2D można znaleźć na stronie cellculture.sarstedt.com). Alternatywnie powierzchnię hodowli pokrywa się dodatkowo białkami macierzy pozakomórkowej. Z kolei, aby zapobiec adhezji komórek do powierzchni hodowli i tym samym sprzyjać tworzeniu trójwymiarowych struktur wielokomórkowych, np. sferoidów, wstępnie powlekane, dostępne na rynku naczynia hodowlane stanowią obecnie rozwiązanie dające nadzieję na uzyskanie bardziej spójnych i powtarzalnych wyników eksperymentalnych. Poprzez opracowanie miarodajnych modeli in vitro do wczesnego przewidywania hepatotoksyczności i właściwości farmakokinetycznych w procesie opracowywania leków z wykorzystaniem pierwotnych ludzkich lub psich hepatocytów, grupa robocza prof. dr Lauschke zamierza przyczynić się do standaryzacji metodologii w tej dziedzinie, aby jednocześnie zmniejszyć konieczność przeprowadzania badań na zwierzętach. [1]

Wykazano, że sferoidy wątrobowe podczas długotrwałej hodowli zachowują fenotypy i funkcje istotne z fizjologicznego punktu widzenia, co kwalifikuje je zarówno do farmakologicznych i toksykologicznych zastosowań o wysokiej przepustowości, jak i do eksperymentalnego odtwarzania chorób przewlekłych, które wymagają powtarzanej ekspozycji na leki. [2-9]

Dostępne na rynku wstępnie powlekane/wstępnie przygotowane płytki do hodowli komórek 3D stanowią szybką i prostą metodę tworzenia sferoidów. Dostępne płytki różnią się zarówno pod względem geometrii, jak i powłoki. Są to czynniki, które wpływają na żywotność komórek, fenotyp molekularny, a także dostępność substancji czynnych. Ta ostatnia może być ograniczona ze względu na wysoką zdolność wiązania powłok. [10,11]

W nowo opublikowanym badaniu płytki do hodowli komórkowej BIOFLOAT™ wykazały doskonałą wydajność pod względem kluczowej cechy jakościowej, jaką jest tworzenie pojedynczych sferoidów w każdym dołku z pierwotnymi ludzkimi hepatocytami (PHH) w ≥ 95% dołków. Sferoidy PHH hodowane na płytkach BIOFLOAT™ wykazały żywotność komórek na poziomie ≥ 90%, przy czym zachowano ekspresję kluczowych genów wątroby związanych z metabolizmem leków, rozkładem etanolu, syntezą kwasów żółciowych i różnicowaniem.

W przypadku traktowania sferoidów PHH prototypowymi substancjami hepatotoksycznymi sferoidy PHH z BIOFLOAT™ reagowały nawet na najniższe stężenia substancji, co wskazuje, że dostępność substancji nie została zmniejszona przez powłokę płytki.

Aby zmniejszyć zapotrzebowanie na badania na zwierzętach w przedklinicznych testach leków, pierwotne hepatocyty psów (PCH) mogą być wykorzystywane jako sferoidy w już ustalonych testach. Wybór powierzchni hodowlanej ma kluczowe znaczenie dla wytworzenia sferoidów z hepatocytów psów, które są fizjologicznie istotne i funkcjonalne, do badań toksyczności ostrej i przewlekłej . BIOFLOAT™ umożliwia skuteczną hodowlę sferoidów pierwotnych hepatocytów psów, a tym samym potencjalne poszerzenie repertuaru metod przedklinicznych.

Ogólnie rzecz biorąc, wyniki te podkreślają przydatność BIOFLOAT™ do hodowli hepatocytów w przedklinicznych badaniach farmakologicznych i toksykologicznych substancji czynnych w porównaniu z różnymi opcjami dostępnymi na rynku.

USE - LS - BIOFLOAT - Landingpage - Subpage Studie

Marketing consent required

Literatura

[1] Xing C, Kemas A, Mickols E, Klein K, Artursson P, Lauschke VM. The choice of ultra-low attachment plates impacts primary human and primary canine hepatocyte spheroid formation, phenotypes, and function. Biotechnol J. 2024 Feb;19(2):e2300587. doi: 10.1002/biot.202300587. PMID: 38403411.

[2] Bell CC, Lauschke VM, Vorrink SU, Palmgren H, Duffin R, Andersson TB, Ingelman-Sundberg M. Transcriptional, Functional, and Mechanistic Comparisons of Stem Cell-Derived Hepatocytes, HepaRG Cells, and Three-Dimensional Human Hepatocyte Spheroids as Predictive In Vitro Systems for Drug-Induced Liver Injury. Drug Metab Dispos. 2017 Apr;45(4):419-429. doi: 10.1124/dmd.116.074369. Epub 2017 Jan 30. PMID: 28137721; PMCID: PMC5363699.

[3] Vorrink SU, Ullah S, Schmidt S, Nandania J, Velagapudi V, Beck O, Ingelman-Sundberg M, Lauschke VM. Endogenous and xenobiotic metabolic stability of primary human hepatocytes in long-term 3D spheroid cultures revealed by a combination of targeted and untargeted metabolomics. FASEB J. 2017 Jun;31(6):2696-2708. doi: 10.1096/fj.201601375R. Epub 2017 Mar 6. PMID: 28264975; PMCID: PMC5434660.

[4] Messner S, Fredriksson L, Lauschke VM, Roessger K, Escher C, Bober M, Kelm JM, Ingelman-Sundberg M, Moritz W. Transcriptomic, Proteomic, and Functional Long-Term Characterization of Multicellular Three-Dimensional Human Liver Microtissues. Appl In Vitro Toxicol. 2018 Mar 1;4(1):1-12. doi: 10.1089/aivt.2017.0022. PMID: 32953943; PMCID: PMC7500040.

[5] Vorrink SU, Zhou Y, Ingelman-Sundberg M, Lauschke VM. Prediction of Drug-Induced Hepatotoxicity Using Long-Term Stable Primary Hepatic 3D Spheroid Cultures in Chemically Defined Conditions. Toxicol Sci. 2018 Jun 1;163(2):655-665. doi: 10.1093/toxsci/kfy058. PMID: 29590495; PMCID: PMC5974779.

[6] Proctor WR, Foster AJ, Vogt J, Summers C, Middleton B, Pilling MA, Shienson D, Kijanska M, Ströbel S, Kelm JM, Morgan P, Messner S, Williams D. Utility of spherical human liver microtissues for prediction of clinical drug-induced liver injury. Arch Toxicol. 2017 Aug;91(8):2849-2863. doi: 10.1007/s00204-017-2002-1. Epub 2017 Jun 13. PMID: 28612260; PMCID: PMC5515971.

[7] Riede J, Wollmann BM, Molden E, Ingelman-Sundberg M. Primary human hepatocyte spheroids as an in vitro tool for investigating drug compounds with low clearance. Drug Metab Dispos. 2021 Jun 1:DMD-AR-2020-000340. doi: 10.1124/dmd.120.000340. Epub ahead of print. PMID: 34074732.

[8] Kanebratt KP, Janefeldt A, Vilén L, Vildhede A, Samuelsson K, Milton L, Björkbom A, Persson M, Leandersson C, Andersson TB, Hilgendorf C. Primary Human Hepatocyte Spheroid Model as a 3D In Vitro Platform for Metabolism Studies. J Pharm Sci. 2021 Jan;110(1):422-431. doi: 10.1016/j.xphs.2020.10.043. Epub 2020 Oct 26. PMID: 33122050.

[9] Preiss LC, Lauschke VM, Georgi K, Petersson C. Multi-Well Array Culture of Primary Human Hepatocyte Spheroids for Clearance Extrapolation of Slowly Metabolized Compounds. AAPS J. 2022 Mar 11;24(2):41. doi: 10.1208/s12248-022-00689-y. PMID: 35277751.

[10] Costa EC, de Melo-Diogo D, Moreira AF, Carvalho MP, Correia IJ. Spheroids Formation on Non-Adhesive Surfaces by Liquid Overlay Technique: Considerations and Practical Approaches. Biotechnol J. 2018 Jan;13(1). doi: 10.1002/biot.201700417. Epub 2017 Nov 15. PMID: 29058365.

[11] Palmgrén JJ, Mönkkönen J, Korjamo T, Hassinen A, Auriola S. Drug adsorption to plastic containers and retention of drugs in cultured cells under in vitro conditions. Eur J Pharm Biopharm. 2006 Nov;64(3):369-78. doi: 10.1016/j.ejpb.2006.06.005. Epub 2006 Jun 29. PMID: 16905298.